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探針?lè)晒舛縋CR試劑盒常見(jiàn)問(wèn)題處理方法

更新時(shí)間:2025-10-13 點(diǎn)擊量:557
  以下是探針?lè)晒舛縋CR試劑盒常見(jiàn)問(wèn)題的處理方法:
  1.無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物
  可能原因:樣本中無(wú)目標(biāo)DNA、引物設(shè)計(jì)不當(dāng)、Taq酶失活等。
  解決方案:檢查樣本質(zhì)量,確保樣本中含有足夠的目標(biāo)核酸;優(yōu)化引物設(shè)計(jì),使其更特異性地結(jié)合目標(biāo)序列;更換新的Taq酶。
  2.非特異性擴(kuò)增
  可能原因:退火溫度過(guò)低、模板DNA污染等。
  解決方案:適當(dāng)提高退火溫度,以增強(qiáng)引物與目標(biāo)序列的特異性結(jié)合;優(yōu)化模板純化步驟,去除雜質(zhì)和其他非特異性DNA片段。
  3.探針?lè)晒舛縋CR試劑盒熒光信號(hào)異常
  可能原因:探針或引物濃度不當(dāng)、熒光染料干擾等。
  解決方案:仔細(xì)調(diào)整探針和引物的濃度,使其達(dá)到最佳工作范圍;避免使用可能干擾熒光信號(hào)的染料或其他物質(zhì)。
  4.沒(méi)有Ct值
  可能原因:循環(huán)數(shù)不夠、PCR程序設(shè)置錯(cuò)誤、引物或探針降解、模板量降解或上樣量不足、引物探針不合適等。
  解決方案:增加循環(huán)次數(shù),但一般不超過(guò)45循環(huán);檢查并修正PCR程序中檢測(cè)熒光信號(hào)的步驟;通過(guò)PAGE電泳檢測(cè)引物和探針是否降解,如有需要?jiǎng)t更換;對(duì)未知濃度的樣本從系列稀釋樣本的最高濃度做起,避免模板降解,將模板樣本小量分裝儲(chǔ)備,防止反復(fù)凍融;重新設(shè)計(jì)更合適的引物和探針,特別是要確保引物跨越內(nèi)含子以擴(kuò)增基因組DNA,且上下游引物Tm值相差不宜超過(guò)4℃。
  5.Ct值過(guò)晚
  可能原因:擴(kuò)增效率低、PCR程序不合適、MgCl?濃度不合適、PCR產(chǎn)物太長(zhǎng)、模板中存在抑制物等。
  解決方案:優(yōu)化引物之間或者引物和探針的比例;重新設(shè)計(jì)引物或探針;改用三步法進(jìn)行反應(yīng),或者優(yōu)化退火/延伸溫度,可適當(dāng)降低退火溫度,并在推薦的時(shí)間條件下延長(zhǎng)10s;增加鎂離子濃度;縮短PCR產(chǎn)物長(zhǎng)度;使用高純度模板進(jìn)行PCR檢測(cè)或?qū)⒛0暹M(jìn)行稀釋。
  6.陰性對(duì)照擴(kuò)增有信號(hào)
  可能原因:引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化、引物濃度不佳、鎂離子濃度過(guò)高、模板有基因組污染、交叉污染等。
  解決方案:優(yōu)化引物設(shè)計(jì),避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn);適當(dāng)降低引物濃度,并注意上下游引物的濃度配比;適當(dāng)降低鎂離子濃度,或選擇更適合的mix試劑盒;在RNA提取過(guò)程中避免基因組DNA的引入,或通過(guò)引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增;對(duì)操作環(huán)境進(jìn)行處理,更換新的環(huán)境、加樣器、槍頭以及所有的引物、試劑等,防止交叉污染。
  7.探針?lè)晒舛縋CR試劑盒標(biāo)準(zhǔn)曲線不佳
  可能原因:標(biāo)準(zhǔn)品稀釋或者加樣誤差、標(biāo)準(zhǔn)品降解、引物或探針不佳、模板中存在抑制物等。
  解決方案:仔細(xì)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)品稀釋和加樣操作,確保標(biāo)準(zhǔn)品呈梯度;避免標(biāo)準(zhǔn)品反復(fù)凍融,將高濃度DNA模板分裝保存于-20℃或-80℃,現(xiàn)配現(xiàn)用;重新設(shè)計(jì)更好更穩(wěn)定的引物或探針;控制模板濃度在一定范圍內(nèi),一般為50—500ng。
  8.熔解曲線峰不特異
  可能原因:引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化、引物濃度不佳、模板有基因組污染、離子濃度不合適等。
  解決方案:優(yōu)化引物設(shè)計(jì),避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn);適當(dāng)降低引物濃度,并注意上下游引物的濃度比例;在RNA提取過(guò)程中避免基因組DNA的引入,或通過(guò)引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增;適當(dāng)降低鎂離子濃度,或選擇更適合的mix試劑盒。
  9.擴(kuò)增曲線異常
  可能原因:模板的濃度太高或者降解、熒光染料的降解、操作不當(dāng)導(dǎo)致指紋或字跡污染、液體揮發(fā)、氣泡等。
  解決方案:調(diào)整模板濃度至合適范圍,避免反復(fù)凍融導(dǎo)致降解;更換新鮮的熒光染料;在操作熒光定量PCR時(shí)戴上新的一次性手套,蓋上蓋子避免任何指紋或者字跡等污染;檢查耗材氣密性,防止液體蒸發(fā);規(guī)范移液槍加樣操作,避免產(chǎn)生氣泡。
 

 

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